Farklı Konsantrasyonlarda Hazırlanmış Tuz Solüsyonlarının Gökkuşağı Alabalığı (Oncorhynchus mykiss) Spermlerinin Dölleme Kabiliyeti Üzerine Etkisi

Year 2020, Volume: 5 Issue: 3, 309 - 312, 30.09.2020

Mehmet Şimşir , Süleyman Akhan

https://doi.org/10.35229/jaes.748579

Abstract

Farklı tuz (NaCl) konsantrasyona sahip (%0,3-0,6-0,12) dölleme eriyiklerini gökkuşağı alabalığı (O. mykiss) sperm hareket sürelerine ve dölleme kabiliyetlerine etkisi belirlenmiştir. Kontrol için kullanılan distile saf suda en kısa hareket süresi belirlenirken %0,3 ile %0,12 tuzluluğa sahip solüsyon ile aktive edilen spermlerde sırasıyla sperm hareket süreleri 65 ± 10,01 ve 50,2 ± 3,12 sn olarak belirlenmiştir. En uzun süreli hareket süresi 75 ± 5,17 sn olarak %0,6 tuzluluğa sahip solüsyonla elde edilmiştir. Saf su ile ortalama dölleme oranı 83,76 ± 0,36 olarak belirlenmiştir. Aktivasyon solüsyonlarında ise % 0,3-0,6 ve 0,12 NaCl içeren gruplarda en iyi dölleme oranı % 0,6 konsantrasyona sahip aktivasyon solüsyonu kullanılan grupta gerçekleşmiştir. Dölleme oranları açısından kontrol grubu ve tuzlu dölleme eriyiği kullanılan tüm grupların ortalamaları arasındaki fark istatistiki olarak önemli bulunmuştur (p<0,05).

Keywords

Aktivasyon solüsyonu, dölleme kabiliyeti, gökkuşağı alabalığı, hareket süresi, sperm

Supporting Institution

yok

Project Number

yok

Thanks

yok

Determination of the Effect of Salt Solutions Prepared in Different Concentrations on Fertilization Ability of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Sperms

Abstract

In this study, the effects of activating solutions prepared with different salt (NaCl) concentrations (0.3-0.6-0.12%) on rainbow trout (O. mykiss) sperm motility durations and fertilization abilities were determined. While determining the shortest movement time in distilled pure water used for control, sperm movement times were determined as 65 ± 10.01 and 50.2 ± 3.12 sec, respectively, in the sperms activated with 0.3% to 0.12% saline solution. The longest motility duration was obtained with a solution of 0.6% salinity as 75 ± 5.17 s. The average fertilization rate with pure water is 83.76 ± 0.36. Among experimental activation solution groups containing 0.3-0.6% and 0.12 NaCl, the best fertilization rate was obtained with a concentration of 0.6% group. In terms of insemination rates, the difference between the averages of all the saline fertilization solution groups was found statistically significant (p <0.05).

Keywords

Activation solution, fertilization ability, motility duration, rainbow trout, sperm

Project Number

yok

References

• Akhan, S., Sonay, F.D. & Yandi, I. (2016). Ağ-kafeslerde kışlatılan gökkuşağı alabalığında (Oncorhynchus mykiss) uzun süreli açlığın bazı verim özellikleri ile vücut kompozisyonu üzerine etkisi. Yunus Araştırma Bülteni, 16, 265-269. Alavi, S.M.H. & Cosson, J. (2005). Sperm motility in fishes. I. Effects of temperature and pH: a review. Cell Biology International 29, 101– 110. Billard, R. (1978). Changes in structure and fertilizing ability of marine and preshwater fish spermatozoa diluted in media of various salinities, Aquaculture, 14(3), 187-198. Billard, R., Cosson, J., Perchec, G. & Linhart, O. (1995). Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture, 129(1–4), 95-112 Canyurt, M.A., Akhan, S. & Takma, Ç. (2003). Gökkuşağı Alabalığı (Oncorhynchus mykiss Walbaum,1792) spermlerinin kısa süre saklanması üzerine bir araştırma, E.Ü. Su Ürünleri Dergisi, 20, 537-542. Cosson, M.P., Billard, R., Gatti, J. L. & Christen, R. (1985). Rapid and quantitative assessment of trout spermatozoa motility using stroboscopy. Aquaculture 46, 71– 75. Goodall, J.A., Blackshaw, A.W. & Capra, M.F. (1989) Factors affecting the activation and duration of motility of the spermatozoa of the summer whiting (Sillago ciliata), Aquaculture, 77(2–3), 243-250. Khara, H., Noveiri, S.B., Dadras, H., Rahbar, M., Ahmadnejad, M., & Khodadoost, A. (2014). Effect of different activation solutions on motility and fertilizing ability of spermatozoa in common carp Cyprinus carpio Linnaeus, 1758. Indian Journal of Fisheries, 61, 63–68. Krise, W.F., Hendrix, M.A., Bonney, W.A. & Baker‐Gordon, S.E. (1995). Evaluation of sperm‐activating solutions in atlantic salmon Salmo salar fertilization tests. Journal of the World Aquaculture Society, 26, 384-389. Lahnsteiner, F., Weismann, T. & Patzner, R. A. (1998). Determination of the semen quality of the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, by sperm motility, seminal plasma parameters, and spermatozoal metabolism. Aquaculture, 163, 163-181. Morisawa, M. & Suzuki, K. (1980). Osmolality and potassium ion: their roles in initiation of sperm motility in teleosts. Science, 110, 1145-1147. Piironen, J. & Hyvärinen, H. (1983). Composition of the milt of some teleost fishes. Journal of Fish Biology, 22, 351-361. Stoss, J. (1983). Fish Gamete preservation and spermatozoan physiology. In: Hoar, W.S., Randall, D.J. & Donaldson, E.M. (Ed. ) Fish Physiology, Volume 9, Part B, 305-350p, Academic Press, New York-USA. Woolsey, J., Holcomb, M., Cloud, J.G. & Ingermann, R.L. (2006), Sperm motility in the steelhead Oncorhynchus mykiss (Walbaum): influence of the composition of the incubation and activation media. Aquaculture Research, 37, 215-223.