İneklerde Subklinik Mastitis Tanısında Akut Faz Proteinlerinden Amiloid A ve C-Reaktif Protein Düzeylerinin Değerlendirilmesi

Yıl 2021, Cilt: 14 Sayı: 2, 131 - 135, 31.12.2021

Tuğba Armağan Aydin , Birten Emre

https://doi.org/10.47027/duvetfd.991646

Cited By: 2

Öz

Subklinik mastitis, en yaygın gözlenen önemli yangısal sürü hastalıklarından birisidir. Çalışmamızda bu hastalığın tanısında süt ve kanda amiloid A (AA) ve C-reaktif protein (CRP) parametrelerinin yeni bir tanı seçeneği olarak ortaya konulması amaçlanmıştır. Çalışma laktasyonun farklı dönemlerinde bulunan toplam 40 adet Holstein ırkı sağmal inek üzerinde yürütüldü. Strip kap muayenesinin ardından süt ve meme muayenesinde herhangi bir fiziksel bozukluk gözlenmeyen meme loblarına subklinik mastitis (SCM) tanısı amacıyla Kaliforniya Mastitis Testi (CMT) uygulandı. CMT’de sadece Ş ve +1 skorlar SCM pozitif olarak çalışmaya dahil edildi. Bu sonuçlar doğrultusunda 2 grup oluşturuldu; Grup I (n=40), CMT yönünden her 4 meme lobu da negatif olan ineklere ait serum ve süt örnekleri, Grup II (n=40)’ye ise CMT’ye göre pozitif olan serum ve süt örnekleri dahil edildi. Süt ve kan serumunda amiloid A ve CRP düzeyinin belirlenmesinde ticari ELISA kitleri kullanıldı. Çalışmada, ortalama AA düzeyleri sağlıklı olan serum ve süt örneklerinde sırasıyla 0,685±0,006 ng/ml; 0,665±0,007 ng/ml; SCM olanlarda ise sırasıyla 2,04±0,064 ng/ml ve 1,848±0,06 ng/ml belirlendi (p<0,001). CRP düzeyleri ise, sağlıklı olanlarda serum ve sütte sırasıyla 0,172±0,002 mg/ml; 0,155±0,002 mg/ml, SCM olanlarda ise sırasıyla 0,555±0,013 mg/ml ve 0,535±0,014 mg/ml olarak hesaplandı (p<0,001). Gruplar arası akut faz protein parametreleri değerlendirmesinde; serum ve süt AA ve CRP değerlerinin istatiksel olarak gruplar arasında önemli derecede farklı olduğu tespit edildi. Sonuç olarak AA ve CRP’nin subklinik masititisi belirlemede öne çıkabileceği düşünülmektedir.

Anahtar Kelimeler

Amiloid A, Akut faz proteini, C- reaktif protein, İnek, Subklinik mastitis

Destekleyen Kurum

Harran Üniversitesi Bilimsel Araştırma Projeleri Koordinatörlüğü

Proje Numarası

19252

Teşekkür

Çalışma sürecindeki destek ve katkılarından dolayı Harran Üniversitesi Veteriner Fakültesi Doğum ve Jinekoloji AD, Mikrobiyoloji AD Öğretim Üyeleri ve lisansüstü öğrencilerine, aynı zamanda istatiksel değerlendirme sürecindeki katkılarından dolayı Dr. Öğr. Üyesi Tuğra AKKUŞ’a en içten dileklerimizle teşekkür ederiz.

Kaynakça

• 1. Baştan A (2010). İneklerde Meme Sağlığı ve Sorunları. Kardelen Matbaacılık Ankara.
• 2. Sabuncuoğlu N, Çoban Ö (2006). Mastitis Ekonomisi. Atatürk Üniversitesi Vet. Bil. Derg. 1 (1-2) 1-5
• 3. Kaymaz M (Ed.) (2016) Evcil Hayvanlarda Meme Hastalıkları. Medipres Yayıncılık.
• 4. Gökçe İ, Bozukluhan K (2009). Çiftlik Hayvanlarında Önemli Akut Faz Proteinleri ve Bunların Veteriner Hekimlik Alanındaki Kullanımı. Dicle Üniv Vet Fak Derg. 1(1):1- 14.
• 5. El Nahas SM, El Kasas AH, Mossallem AAA, Abdelhamid MI, Warda M (2017). A Study on IL8RB Gene Polymorphism as a Potential immuno-compromised Adherent in Exaggeration of Parenteral and Mammo-crine Oxidative Stress During Mastitis in Buffalo. J Adv Res. 8(6): 617–625.
• 6. Viguier C, Arora S, Gilmartin N, Welbeck K, Kennedy R (2009). Mastitis detection: current trends and future perspectives. Trend Biotechnol. Aug;27(8):486-93.
• 7. Tóthová C, Nagy O, Seidel H and Kovác G (2012). Acute Phase Proteins in Relation to Various İnflammatory Diseases of Calves. Comp. Clin. Pathol.21(5): 1037-1042.
• 8. Sack GH (2018). Serum Amyloid A – A review. Mol Med.2018;24:46
• 9. Jayaraman S, Gantz DL, Haupt and Gursky O (2017). Serum Amyloid A Forms Stable Oligomers that Disrupt Vesicles at Lysosomal pH and Contribute to the Pathogenesis of Reactive Amyloidosis. Proc Natl Acad Sci USA. 114(32):E6507-E6515.
• 10. Baranova IN, Bocharov AV, Vishnyakova TG, et al (2010). CD36 Is a Novel Serum Amyloid A (SAA) Receptor Mediating SAA Binding and SAA-induced Signaling in Human and Rodent Cells, J.Biol Chem. 285(11):8492-8506.
• 11. Eckersall PD, Young FJ, McComb C, et al (2001). Acute Phase Proteins in Serum and Milk From Dairy Cows with Clinical Mastitis. Vet. Rec. 148(2): 35-41.
• 12. Hussein HA, Razik KH, Gomaa AM, Elbayoumy MK, Abdelrahman KA and Hosein HI (2018). Milk Amyloid A as a Biomarker for Diagnosis of Subclinical Mastitis in Cattle. Vet World. 11(1):34-41.
• 13. Sevgisunar N, Şahinduran Ş (2014). Acute Phase Proteins, Purpose of Uses and Clinical Importance in Animals. MAKÜ Sag. Bil. Enst. Derg. 2(1):50-72
• 14. Jacob T, Subramani G, Sivaprakasam P, Xavier AP, Mukhopadhyay HK (2017). Immuno-Detection of C3a, a C3 Complement Activated Product in Mastitis Milk, a Potential Diagnostic Marker. Vet Sci. 23;4(1).
• 15. Schalm DW, Carroll EJ, Jaın NC (1971).Bovine Mastitis. Philadelphia: Lea&Febiger.
• 16. Harmon RJ, Eberhart RJ, Jasper DE, Langlois BE, Wilson RA (1990). Microbiological Procedures for Diagnosis of Bovine Udder İnfection. National Mastitis Council Inc.
• 17. Heikkilä AM, Liski E, Pyörälä S, Taponen S (2018). Pathogen-Specific Production Losses in Bovine Mastitis. J Dairy Sci. Oct;101(10):9493-9504
• 18. Gerardi G, Bernardini D, Azzurra Elia C, Ferrari V lob L, Segato S (2009). Use of Serum Amyloid A and Milk Amyloid A in the Diagnosis of Subclinical Mastitis in Dairy Cows. J. Dairy Res. J. Dairy Nov;76(4):411-7.
• 19. Thomas FC, Waterston M, Hastie P, Parkin T, Haining H, Eckersall PD (2015). The major Acute Phase Proteins of Bovine Milk in a Commercial Dairy Herd. BMC Vet Res. Aug 15;11:207
• 20. Jadhav PV, Das DN, Suresh KP, and Shome BR (2018). Threshold Somatic Cell Count for Delineation of Subclinical Mastitis Cases. Vet World. 11(6):789–793.
• 21. Sargeant JM, Leslıe KE, Shırley JE, Pulkrabek BJ, Lım GH (2001). Sensitivity and Specificity of Somatic Cell Count and California Mastitis Test for Identifying Intramammary Infection in Early Lactation. J. Dairy Sci. 84: 2018-2024.
• 22. Wollowski L, Heuwieser W, Kossatz A, et al (2021). The Value of the Biomarkers Cathelicidin, Milk Amyloid A, and Haptoglobin to Diagnose and Classify Clinical and Subclinical Mastitis. J Dairy Sci. Feb;104(2):2106-2122.
• 23. Çenesiz S, Gürler H, Fındık A, Çiftci G, Ertekin A, Çenesiz M (2018). Acute Phase Proteins in Staphylococcus aureus Positive Milks. Etlik Vet Mikrobiyol Derg. 29 (2): 111-115.
• 24. Akerstedt M, Forsbäck L, Larsen T, Svennersten-Sjaunja K (2011). Natural Variation in Biomarkers İndicating Mastitis in Healthy Cows. J Dairy Res. Feb;78(1):88-96.
• 25. Otsuka M, Sugıyama M, Ito T, Tsukano K, Oıkawa S and Suzukı K (2021). Diagnostic Utility of Measuring Serum Amyloid A with a Latex Agglutination Turbidimetric İmmunoassay in Bovine Mastitis: Comparison with Haptoglobin and alpha 1 acid glycoprotein. J. Vet. Med. Sci. 83(2): 329–332.
• 26. Grönlund U, Sandgren CH, Waller KP (2005). Haptoglobin and Serum Amyloid A in milk from dairy cows with chronic sub-clinical mastitis Vet. Res. 36:191–198.
• 27. Bochniarz M, Zdzisińska B, Wawron W, Szczubiał M, and Dąbrowski R (2017). Milk and serum IL-4, IL-6, IL-10, and Amyloid A Concentrations in Cows with Subclinical Mastitis Caused by Coagulase-Negative Staphylococci. J. Dairy Sci. 100:9674–9680.
• 28. Schrödl W, Krüger M, Hien TT, Füldner M, Kunze R (1995). C-reactive Protein as a new Parameter of Mastitis, Tierärztl. Prax. 23:337–341.
• 29. Fetherston CM, Wells JI and Hartmann PE (2006). Severity of Mastitis Symptoms as a Predictor of C-Reactive Protein in Milk and Blood During Lactation. Breastfeedıng Medıcıne. 19:3.
• 30. Hamann J, Kruger M, Kretschmar M, Nipp B, Gyodi P (1997). C-reactive Protein in Milk of Healthy and Subclinically Diseased Bovineudder Quarters, Milchwissenschaft 52:546–550.
• 31. Yogeshpriya S and Selvaraj P (2019). C-Reactive Protein in Veterinary Practice. Dairy and Vet. Sci. J. 13: 555858.
• 32. Eckersall PD, Conner JG (1988). Bovine and Canine Acute Phase Proteins. Vet. Res. Commun. 169–178.
• 33. Lehtolaınen T, Røntved C, Pyörälä S (2004). Serum amyloid A and TNFα in Serum and Milk During Experimental Endotoxin Mastitis. Vet. Res. 35:651–659.