Bezelye Bitkisinin Organogenez Yöntemi ile Rejenerasyonu

Yıl 2020, , 103 - 107, 15.12.2020

Dilek Tekdal

https://doi.org/10.47495/okufbed.752129

Öz

Bitki hücre, doku ve organ kültürü yöntemlerinin kullanılması bitki klonal çoğaltımı için önemli olduğu kadar ileri moleküler tekniklerde uygulanılan genetik manipülasyonları için de önemlidir. Bu araştırmada, insan besin gıdaları içerisinde önemli yer tutan ve yüksek protein içeriğine sahip baklagiller ailesinden bezelye bitkisinin mikroçoğaltımı üzerine farklı besin oramı (MS ve B5) ve farklı bitki büyüme düzenleyicilerinin (NAA, GA3 ve Kinetin) etkisi çalışılmıştır. Bitkisel materyal olarak bezelye bitkisi (Pisum sativum L.) ovül eksplantları kullanılmıştır. Çalışma sonucunda en iyi kallus oluşum oranı (%80) Kinetin (1 mg mL-1) ve GA3 (1 mg mL-1) içeren MS besin ortamından sağlanmıştır.

Anahtar Kelimeler

Baklagiller, Bezelye, Bitki Büyüme Düzenleyicileri, Mikroçoğaltım

Kaynakça

• [1] Çiftçi C.Y. Dünyada ve Türkiye’de yemeklik tane baklagiller tarımı. Ankara Üniversitesi Ziraat Fakültesi Tarla Bitkileri Bölümü, TMMOB Ziraat Mühendisleri odası teknik yayınlar dizisi no: 5; 2004.
• [2] Pekşen E., Artık C. Antinutritional factors and nutritive values of food grain legumes. The Journal of Agricultural Faculty of Ondokuz Mayıs University 2005; 20(2): 111-121.
• [3] Hofer J., Turner L., Hellens R., Ambrose M., Matthews P., Michael A., Ellis, N. UNIFOLIATA regulates leaf and flower morphogenesis in pea. Current Biology 1997; 7:581–587.
• [4] FAOSTAT. Crops. 2016. http://www.fao.org/faostat/en/#data/QC. Son erişim tarihi: 03 Haziran 2020.
• [5] TÜİK. Kuru Baklagiller. 2019. http://www.tuik.gov.tr/PreTablo.do?alt_id=1001 Son erişim tarihi: 03 Haziran 2020.
• [6] Karayel R., Bozoğlu H. Türkiye’nin farklı bölgelerinden toplanan yerel bezelye populasyonunun bazı agronomik özellikleri. OMÜ Ziraat Fakültesi Dergisi 2008; 23(1): 32-38.
• [7] Babaoğlu M., Gürel E., Özcan S. Bitki Biyoteknolojisi, Doku Kültürü ve Uygulamaları. Selçuk Üniversitesi Vakfı Yayınları; 2001.
• [8] Chawla H. S., Introduction to Plant Biotechnology, 2nd ed., USA: Science Publisher INC; 2004.
• [9] Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 1962; 15: 473-497.
• [10] Gamborg O.L., Murashige T., Thorpe, T.A. Vasil I.K. Plant tissue culture media. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant 1976; 12: 473–478.
• [11] Schween G., Schwenkel H.G. Effect of genotype on callus induction, shoot regeneration, and phenotypic stability of regenerated plants in the greenhouse of Primula ssp. Plant Cell Tissue and Organ Culture 2003; 72: 53–61.
• [12] Winkelmann T., Serek M. Genotypic differences in callus formation and regeneration of somatic embryos in Cyclamen persicum Mill. Euphytica 2005; 144: 109-117.
• [13] Sharma G., Nautiyal AR. Influence of explants type and plant growth regulators on In vitro multiple shoots regeneration of a Laurel from Himalaya. Nature and Science 2009; 7(9).